Свекла морковь по оптовым ценам!

Продаем свеклу морковь недорого!

Кто хочет купить обращайтесь!

Продажа СВЕКЛЫ и МОРКОВИ ОПТОМ.
Оптовые поставки в Уфе 8-961 049 20 13
 

E-Mail: KFX.zarip@yandex.ru  
Свекла от производителя с 15/07/17г.

Защита растений от сорняков, гербициды купить, с сорняками БОРЬБА
 с вредителями, 8(3472)23-08-73; agroz@ufamail.ru, болезни и вредители.

Научные способы размножения семян картофеля, овощей и цветов - Технология клонального микроразмножения.

Главная » КАРТОФЕЛЬ » Научные способы размножения семян картофеля, овощей и цветов

Технология клонального микроразмножения семян картофеля овощей и цветов

Продажа семян картофеля, семена картофеля купить оптовая продажа семена картошки. 

Для растеней характерно два вида размножения
: семенной и вегетативный
.

  • Оба эти способа имеют как преимущества, так и недостатки.
  • К недостаткам размножения семенами следует отнести, в первую очередь, не однородность полученного посадочного материалa и длительность периода размнощения.
  • При вегетативном размножении сохраняется генотип материнского растения и сокращается продолжительность периода размножения
  1. Достижения в области культуры клеток и тканей привели к созданию принципиально нового метода вегетативного размножения - клонального микроразмножения (в пробирке), неполовым путем растений, генетически идентичных исходному экземпляру.
  2. В основе метода лежит уникальная способность растительной клетки реализовывать присущую ей возможность деления клеток , то есть под влиянием химических воздействий давать начало целому растительному организму.
  3. Этот метод, несомненно, имеет ряд преимуществ перед существующими традиционными способами размножения:
  4. получение генетически однородного посадочного материала картофеля;
  5. освобождение растений от вирусов за счет использования меристемной культуры;
  6. высокий коэффициент размножения  для овощных растений и картофеля.
  7. сокращение продолжительности селекционного процесса картофеля и семян овощей;
  8. ускорение перехода растений к репродуктивной фазе развития;
  9. размножение растений, трудно размножаемых традиционными способами;
  10. возможность проведения работ в течение года и экономия площадей, необходимых для выращивания посадочного материала;

Первые достижения в области клонального микроразмножения были получены в конце 50-х годов XX столетия французским ученым Жоржем Морелем. В промышленных масштабах пассировку производят намного чаще, на стадии эмбриона, протокорма, дифференцированного протокорма, и при этом используют разные питательные среды, стимулирующие тот или иной процесс.

Например, при использовании питательной среды с повышенным содержанием цитокининов, протокорм образует конгломерат вторичных протокормов, при этом из оного семени можно получить десятки и сотни протокормов и в последствии растений.

Конгломераты разделяют на отдельные протокормы и высаживают на новую питательную среду с меньшим содержанием цитокининов и преобладанием ауксинов, при этом протокорм дифференцируется, образуется первичные листья и корни.

Но в домашних условиях без ламинара или его подобия, пассировать сеянцы на новую питательную среду опасно велика вероятность инфицирования. Что делать, когда сеянцы останавливаются в росте, и нет возможности, перенести их на свежую питательную среду.

Если сеянцы очень малы, вскрывать пробирки не рекомендуют, но если среда темнеет, а сеянцы перестали расти, без пересадки они медленно погибнут. При таком развитии событий рекомендуется перенести сеянцы в тепличку на живой или сухой сфагнум и периодически удобрять. На практике в таких условиях сеянцы растут очень медленно велик риск выпада, периодически подгнивают корни, вероятно, это обусловлено низким рН мха сфагнум.

Состав субстрата.

  1. Сфагновый торф (верховой) - 70 - 75%
  2. Перлит - 25 - 30%
  3. Доломитовая мука как раскислитель - 2,5 - 3 г/л субстрата рН субстрата - 5,5 - 6,5добавляем макро и микроэлементы

В результате им было обнаружено, что этот процесс бесконечен и можно было получать в большом количестве высококачественный и генетически однородный, безвирусный посадочный материал.

В России работы по клональному микро - размножению картофеля занимались в Башкирии на базе крупнейшего хозяйства Бакалинского района  выращеванием семян картофеля  в больших обьемах совмесно с учеными Москвы и Ленинграда.

Картофелеводческое хозяйство обеспечевала безвирусными семенами картофеля всё Поволжие и Урал но увы хозяйства больше нет, завезем семена картофеля из Голландии и скоро будем вообще без картошки.

Были изучены условия микро размножения картофеля, сахарной свеклы, и некоторых других овощей и предложены промышленные технологии. Таким образом, первые успехи в клональном микроразмножении связаны с культивированием апикальных меристем овощных растений на соответствующих питательных средах, обеспечивающих в конечном итоге получение растений-блезнецов.

В настоящее время насчитывается много видов  растений из 40 семейств, которые были размножены а работы в этом направлении велись в научных учреждениях Москвы, Санкт-Петербурга, Воронежа, Уфы, Новосибирска. Этапы и методы клонального микроразмножения

  • Процесс клонального микроразмножения можно разделить на четыре этапа:
  • выбор растения-донора, изолирование экспонтов и получение хорошо растущей стерильной культуры;
  • выращивание растений в условиях теплицы и подготовка их к реализации или посадке в поле.

Существует несколько методов клонального микроразмножения. Многие ученные проводя индивидуальные исследования по влиянию условий(питательная среда, концентрация минеральных и органических веществ, тип субстрата) культивирования эксплантов на процессы морфогенеза, наблюдали разные ответные морфогенетические реакции на изменение условий выращивания что в свою очередь привело к созданию новых классификаций методов клонального микроразмножения:

Исходя из предложенных в литературе методов микроразмножения растений, этот процесс возможно осуществлять следующими путями:
Активация развития уже существующих в растении меристем пазушные и спящие почки и зоны стебля);
Основной метод, применяемый при клональном микроразмножении растений - это активация развития уже существующих в растении меристем основывающийся на снятии апикального доминирования.

Это может быть достигнуто двумя путями:
удалением верхушечной меристемы стебля и последующим микрочеренкованием побега на безгормональной среде;
добавлением в питательную среду веществ цитокининового типа действия, индуцирующих развитие многочисленных пазушных побегов.

 Как правило, в качестве цитокининов используют 6-бензиламинопурин (БАП) или 6-фурфуриламинопурин (кинетин), а также 2-изопентениладенин (2ip) и зеатин.

Полученные таким образом побеги отделяют от первичного материнского экспланта и вновь культивируют на свежеприготовленной питательной среде, стимулирующей пролиферацию пазушных меристем и возникновение побегов более высоких порядков.

В настоящее время этот метод широко используется в производстве безвирусного посадочного материала сельскохозяйственных культур как технических (сахарная свекла, хмель, табак, топинамбур, стахис), так и овощных (томаты, картофель, огурец, перец, тыква, спаржа и др.). А также для размножения культур промышленного цветоводства (гвоздика, хризантема, роза, гербера), тропических и субтропических растений (рододендрон, азалия, камелия, чай и др.), плодовых и ягодных культур (земляника, яблоня, слива, вишня, груша, виноград, малина, смородина, крыжовник и др.

Для некоторых сельскохозяйственных культур, таких как картофель, технология клонального микроразмножения поставлена на промышленную основу. Применение метода активации развития существующих в растении меристем позволяет получать из одной меристемы картофеля более 105 растений в год, причем технология предусматривает получение в пробирках микроклубней - ценного, безвирусного семенного материала.

Второй метод - это индукция возникновения адвентивных почек непосредственно тканями экспланта. Он основан на способности изолированных частей растения при благоприятных условиях питательной среды восстанавливать недостающие органы и, таким образом, регенерировать целые растения.

Образования адвентивных почек можно добиться почти из любых органов и тканей растения (изолированного зародыша, листа, стебля, семядолей, чешуек и донца луковицы, сегментов корней и зачатков соцветий), если их удается получить свободными от инфекции.

Этот процесс, как правило, происходит на питательных средах, содержащих один цитокинин или в сочетании с ауксином, находящихся в соотношении 10:1 или 100:1 в качестве ауксина в этом случае наиболее часто используют бета-индолил-3-уксусную кислоту (ИУК) или альфа-нафтилуксусную кислоту (НУК).

Это наиболее распространенный метод микроразмножения высших растений, которым были размножены многие луковичные цветочные растения (нарциссы, лилии, гиацинт, гладиолусы, тюльпаны) из луковичных чешуи, сегментов базальной части донца луковиц, эксплантов листьев;

представители рода Brassica (капуста цветная, кочанная, брюссельская, листовая, брокколи - из сегментов гипокотиля, семядолей, листьев; лук, чеснок - из верхушечной меристемы, ткани донца луковиц; томаты - из апикальных или пазушных меристем; салат цикорный - из сегментов листовых пластинок; петуния - из сегментов корней; глоксиния, фиалки - из сегментов листовых пластинок, а также некоторые представители древесных растений - из изолированных зрелых и незрелых зародышей.

Достаточно хорошо разработана технология клонального микроразмножения земляники, основанная на культивировании апикальных меристем. Меристематические верхушки изолируют из молодых, свободных от вирусных болезней, растений и выращивают на модифицированной питательной среде Мурасига и Скуга, содержащей БАП в концентрации 0,1-0,5 мг/л. Через 3-4 недели культивирования меристема развивается в самостоятельное растение, в основании которого формируются адвентивные почки, которые быстро растут и дают начало новым почкам.

В течение 6-8 недель образуется конгломерат почек, связанных между собой соединительной тканью и находящихся на разной стадии развития. Появляются листья на коротких черешках, в нижней части которых формируются новые адвентивные почки. Эти почки разделяют, и пересаживают на свежую питательную среду.

На среде с цитокинином продолжается пролиферация придаточных побегов, а на среде без регуляторов роста в течение 4-6 недель формируются нормальные растения с корнями и листьями. Морфогенетическая активность экспланта сохраняется в течение 3-4 лет. Таким образом, от одного материнского растения можно получать несколько миллионов растений-регенерантов в год..

Через каллусную культуру были размножены: сахарная свекла, некоторые представители рода Brassica, кукуруза, рис, пшеница и другие злаковые, подсолнечник, лен, разработаны условия, способствующие регенерации растений из каллуса огурца, картофеля, томатов.

Оздоровление посадочного материала от вирусов.

Основное преимущество клонального микроразмножения - это получение генетически однородного, безвирусного посадочного материала. Этого возможно достичь, используя меристемные ткани апексов и пазушных почек органов стеблевого происхождения. Как правило, меристема состоит из конуса нарастания, а также одного или двух листовых зачатков (примордиев) и является свободной от инфекции.

Структурной основой используемого на практике явления служит специфика строения точки роста растений; дистальная её часть, представленная апикальной меристемой, у разных растений имеет средний диаметр до 200 мкм и высоту от 20 до 150 мкм.

В более нижних слоях дифференцирующиеся клетки меристемы образуют прокамбий, дающий начало пучкам проводящей системы.

Известно, что успех клонального микроразмножения зависит от размера меристематического экспланта, чем больше листовых зачатков и тканей стебля, тем легче идет процесс морфогенеза, заканчивающийся получением целого, нормального пробирочного растения.

Вместе с тем зона, свободная от вирусных частиц, очень различна для разных вирусов. Это зависит также от вида и сорта растения.

При культивировании апикальной меристемы картофеля величиной 200 мкм на питательной среде и дальнейшее получение из неё растений-регенерантов показали, что среди полученных растений только 10 % были свободны от Х-вируса, но 70 % - от Y-вируса.

Применение электронной микроскопии часто обнаруживает наличие вирусов в меристеме пораженных ими растений, это, впрочем, подтверждает общеизвестный факт, что число лишенных вируса растений после подобной операции чрезвычайно мало, и многие меристемы пораженных растений инфекционны.

В принципе возможно получение безвирусной апикальной меристемы от больного растения, но при этом риск попадания вирусов в здоровые ткани должен быть снижен до нуля. Это может быть достигнуто путем применения предварительной термотерапии исходных растений или химеотерапии..

Растения, подвергающиеся термотерапии, помещают в специальные термокамеры, где в течение первой недели повышают температуру от 25° до 37 °C путем ежедневного увеличения параметров температур на 2 °C. Не менее важно при термотерапии создавать и поддерживать на протяжении всего процесса оптимальные режимы: температуру 37 °C, освещенность лампами дневного света 5 тыс. лк, фотопериод в зависимости от культуры 14-16 ч в сутки при относительной влажности воздуха в термокамере 90 %.

Продолжительность термотерапии всецело зависит от состава вирусов и их термостойкости. Если, например, для гвоздики достаточно 10-12-недельного воздействия теплом, то для освобождения хризантемы от Б-вируса этот период длится 12 и более недель. Однако существуют растения, например луковичные культуры, цимбидиум, розы и другие, рост которых угнетается в результате длительной термотерапии. Для таких растений целесообразно проводить термотерапию растений-регенерантов.

Помимо положительного действия термотерапии на освобождение растений от вирусов, выявлен положительный эффект высоких температур на точку роста и процессы морфогенеза некоторых цветочных культур (гвоздики, хризантемы, фрезии) в условиях in vitro. Применение термотерапии позволяет увеличить коэффициент размножения на 50-60 %, повысить адаптацию пробирочных растений-регенерантов к почвенным условиям, а также получить более высокий процент безвирусных маточных растений.

Применение термотерапии в сочетании с меристемной культурой позволяет оздоровить более 70 % растений-регенерантов хмеля от вирусного хлороза, 90 % растений земляники, 25 % - чёрной и красной смородины, 50 % - малины, более 80 % - картофеля.

Проверку растений на наличие вирусов, как правило, проводят с помощью иммуноферментного анализа, электронной микроскопии и травянистых растений-индикаторов. Другой способ, применяемый для освобождения растений от вирусов,- хемотерапия. Он заключается в добавлении в питательную среду, на которой культивируют апикальные меристемы, аналога гуанозина - 1 р-бета-рибофуранозил-1,2,4-триазол-3-карбоскимид (коммерческое название вирозол) в концентрации 20-50 мг/л.

Это противовирусный препарат широкого спектра действия. При использовании вирозола в культуральной среде процент безвирусных меристемных растений для ряда обычных для этих растений вирусов увеличивался до 80-100 % при 0-41 % в контроле.

Положительные результаты химиотерапии были получены для сливы, черешни, малины, некоторых цветочных и других растений. Термо- и хемотерапевтические методы оздоровления посадочного материала от вирусов экономически малоэффективны. Поэтому в настоящее время с помощью методов трансгеноза создаются формы растений с генетической устойчивостью к вирусам.

Техника культивирования растительных тканей на разных этапах клонального микроразмножения

Для культивирования тканей на каждом из четырёх этапов требуется применение определенного состава питательной среды.

Первый этап. На этом этапе необходимо добиться получения хорошо растущей стерильной культуры. Это осуществляется путем стерилизации растительных тканей ртутьсодержащими растворами (сулема, или диацид, 0,1-0,2%-ная) или хлорсодержащими (хлорамин 10-15%-ный, гипохлорит натрия или кальция 5-10%-ный) в течение 5-10 мин для нежных, легко повреждаемых тканей растений и 10-12 мин - для тканей, имеющих более плотную оболочку.

После этого растительные ткани необходимо тщательно промыть в стерильной дистиллированной воде, как правило, в трех порциях и перенести на заранее приготовленную стерильную питательную среду.

Если исходную стерильную культуру экспланта получить трудно, рекомендуется вводить в состав питательной среды антибиотики (тетрациклин, бензилпенициллин и др.) в концентрации 100-200 мг/л.

Это в первую очередь относится к древесным растениям, у которых наблюдается тенденция к накоплению внутренней инфекции. На первом этапе, как правило, используют среду, содержащую минеральные соли по рецепту Мурасига и Скуга, а также различные биологически активные вещества и стимуляторы роста (ауксины, цитокинины) в различных сочетаниях в зависимости от объекта.

В случае, когда наблюдается ингибирование роста первичного экспланта за счет выделения им в питательную среду токсичных веществ (фенолов, терпенов и других вторичных соединений), усилить его рост можно, используя антиоксиданты.

Это возможно двумя способами: омывкой экспланта слабым раствором антиоксиданта в течение 4-24 ч; непосредственным добавлением антиоксиданта в питательную среду. В качестве антиоксидантов используют: аскорбиновую кислоту (1-60 мг/л), глютатион (4-5 мг/л), дитиотриэтол (1-3 мг/л), диэтилдитиокарбамат (2-5 мг/л), поливинилпирролидон (5000-10 000 мг/л). В некоторых случаях целесообразно добавлять в питательную среду адсорбент - древесный активированный уголь в концентрации 0,5-1 %.

Продолжительность первого этапа - от 1 до 2 месяцев, в результате которого наблюдается рост меристематических тканей и формирование первичных побегов.

Второй этап - собственно микроразмножение. На этом этапе необходимо добиться получения максимального количества мериклонов, учитывая при этом, что с увеличением субкультивирований увеличивается число растений-регенерантов с ненормальной морфологией и возможно образование растений-мутантов.

Как и на первом этапе, используют питательную среду по рецепту Мурасига и Скуга, содержащую различные биологически активные вещества, а также регуляторы роста. Основную роль при подборе оптимальных условий культивирования эксплантов играют соотношение и концентрация внесенных в питательную среду цитокининов и ауксинов.

Из цитокининов наиболее часто используют БАП в концентрациях от 1 до 10 мг/л, а из ауксинов - ИУК и НУК в концентрациях до 0,5 мг/л. При долгом культивировании растительных тканей на питательных средах с повышенным содержанием цитокининов (5-10 мг/л) происходит постепенное накопление их в тканях выше необходимого физиологического уровня, что приводит к появлению токсического действия и формированию растений с измененной морфологией. Вместе с тем возможно наблюдать такие нежелательные для клонального микроразмножения эффекты, как подавление пролиферации пазушных меристем, образование витрифицированных (оводненных) побегов и уменьшение способности растений к укоренению.

Отрицательное действие цитокининов возможно преодолеть, по данным Н. В. Катавой и Р. Г. Бутенко, используя питательные среды с минимальной концентрацией цитокининов, обеспечивающих стабильный коэффициент микроразмножения, или чередованием циклов культивирования на средах с низким и высоким уровнем фитогормонов.

3-4 этапы - укоренение микропобегов, их последующая адаптация к почвенным условиям и высадка в поле являются наиболее трудоемкими этапами, от которых зависит успех клонального микроразмножения.

На третьем этапе, как правило, меняют основной состав среды: уменьшают в два, а иногда и в четыре раза концентрацию минеральных солей по рецепту Мурасига и Скуга или заменяют её средой Уайта, уменьшают количество сахара до 0,5-1 % и полностью исключают цитокинины, оставляя один лишь ауксин.

В качестве стимулятора корнеобразования используют бета-индолил-3-масляную кислоту (ИМК), ИУК или НУК.

Укоренение микропобегов проводят двумя способами: 1) выдерживание микропобегов в течение нескольких часов (2-24 ч) в стерильном концентрированном растворе ауксина (20-50 мг/л) и последующее их культивирование на агаризованной среде без гормонов или непосредственно в подходящем почвенном субстрате (импульсная обработка); 2) непосредственное культивирование микропобегов в течение 3-4 недель на питательной среде, содержащей ауксин в невысоких концентрациях (1-5 мг/л в зависимости от исследуемого объекта).

В последнее время предложен пока мало практикуемый метод укоренения пробирочных растений - в условиях гидропоники. Этот метод позволяет значительно упростить этап укоренения и одновременно получать растения, адаптированные к естественным условиям.

Для картофеля возможно использовать бессубстратную гидропонику для получения миниклубней. Затенение нижней части культуральных сосудов плотной чёрной материей или добавление в питательную среду активированного угля способствует укоренению микропобегов.

Пересадка растений-регенерантов в субстрат является ответственным этапом, завершающим процесс клонального микроразмножения.

Наиболее благоприятное время для пересадки пробирочных растений - весна или начало лета. Растения с двумя-тремя листьями и хорошо развитой корневой системой осторожно вынимают из колб или пробирок пинцетом с длинными концами или специальным крючком.

Корни отмывают от остатков агара и высаживают в почвенный субстрат, предварительно простерилизованный при 85-90 °C в течение 1-2 ч. Для большинства растений в качестве субстратов используют торф, песок (3:1); торф, дерновую почву, перлит (1:1:1); торф, песок, перлит (1:1:1).

Исключение составляют семейство орхидных, для которых готовят субстрат, состоящий из сфагнового мха, смеси торфа, листьев бука или дуба, сосновой коры (1:1:1). Приготовленным заранее почвенным субстратом заполняют пикировочные ящики или торфяные горшочки, в которых выращивают растения-регенеранты.

Горшочки с растениями помещают в теплицы с регулируемым температурным режимом (20-22 °C), освещенностью не более 5 тыс. лк и влажностью 65-90 %. Для лучшего роста растений создают условия искусственного тумана.

В тех случаях, когда нет возможности создать такие условия, горшочки с растениями накрывают стеклянными банками или полиэтиленовыми пакетами, которые постепенно открывают до полной адаптации растений.

Через 20-30 дней после посадки хорошо укоренившиеся растения подкармливают растворами минеральных солей или комплексным минеральным удобрением. По мере роста растений их рассаживают в большие емкости со свежим субстратом. Дальнейшее выращивание акклиматизированных растений соответствует принятой агротехнике выращивания для каждого индивидуального вида растений.

Процесс адаптации пробирочных растений к почвенным условиям является наиболее дорогостоящей и трудоемкой операцией. Нередко после пересадки растений в почву наблюдается остановка в росте, опадение листьев и гибель растений.

Это связано, в первую очередь, с тем, что у пробирочных растений нарушена деятельность усичного аппарата, вследствие чего происходит потеря большого количества воды. Во-вторых, у некоторых растений в условиях не происходит образования корневых волосков, что приводит, в свою очередь, к нарушению поглощения воды и минеральных солей из почвы.

Поэтому целесообразно на третьем или четвёртом этапах клонального микроразмножения применять искусственную микоризацию растений (для микотрофных), учитывая их положительную роль в снабжении растений минеральными и органическими питательными веществами, водой, биологически активными веществами, а также в защите растений от патогенов.

Существует два способа заражения растений микоризообразующими грибами: в стерильных условиях. Первый способ более благоприятен, так как в этом случае исключается возможность загрязнений почвы другими микроорганизмами. Кроме того, в условиях in vitro есть возможность контролировать условия культивирования (свет, температура, влажность) и подбирать субстрат (рН, аэрация), обеспечивающий нормальное формирование микоризы.

Растения, размноженные in vitro, развиваются значительно лучше, если их корневая система находилась в контакте с микоризообразующими грибами. В этом случае улучшалось снабжение их азотом, увеличилась в 1,5-2 раза приживаемость растений при их пересадке в почву, а также повышался прирост надземной биомассы. Такие работы были проведены с березой, эвкалиптом, каштаном, сосной, лохом и разными клонами ольхи.

Способ адаптации пробирочных растений.

Он состоит в том, что адаптацию растения безболезненно проходят в пробирках - для этого достаточно снять пробки с тех пробирок, в которых растения достигают пробки.

В таком состоянии растения оставляют на 1,5-2 недели. К концу этого периода верхушка растения и два развитых листочка появляются над пробиркой и такое растение готово к пересадке в почву. Растения пересаживают в стерильной почвенный субстрат вместе с агаром для предотвращения механических повреждений корневой системы.

Побег заглубляют в почвенный субстрат так, чтобы над поверхностью оставался стебель с одним - двумя развитыми листочками, не более. Применение этого способа для адаптации растений винограда к почвенным условиям позволяет упростить и удешевить технику акклиматизации растений. Это достигается вследствие того, что в этом случае туманообразующая установка не используется.

Гербициды где купить в Уфе.

Гербициды; продам для защита растений, купить средства защиты растений. 

Химическая защита растений, фунгициды, инструкция по их применению.
Гербициды цена в Уфе, где купить гербицид в Уфе.
ЗАО АГРОЗАЩИТА Уфа - ул. Р.Зорге, д.25. Прайс.
Стимуляторы роста растений, протравители семян.
Препарат - ядохимикаты;инсектициды, пестициды и агрохимикаты.
Препараты для защиты растений от вредителей.
Контакты; телефон/факс; (347) 223-08-73, 223-53-13.

Презентация1

ЭКОЛОГИЯ, новые 

технологии в строительстве. 

БАНЯ ИЗ СОЛОМЫ. 

ВИДЕО

Новые технологии в строительстве для малого бизнеса в деревне, изобретения и инновации в строительстве, производстве строительных материалов для села.

https://youtu.be/lri58YP8BHs?list=PL3ftEkgsAjcEy7_ldnqNk0zoUHOkHwsfh

Дизайн бани и сауны, утепление бани, как правильно утеплить баню, из чего строить